Подготовка тканей к гистологическому исследованию

1. Декальцинирующую жидкость меняют через

1) 1-2 часа;
2) 24-48 часа;+
3) каждую неделю;
4) каждые 2 недели.

2. Для качественного уплотнения материала его необходимо выдержать

1) как минимум в 2-х сменах парафина при -50ºС;
2) как минимум в 2-х сменах парафина при -56ºС;+
3) как минимум в 3-х сменах парафина при -50ºС;
4) как минимум в 3-х сменах парафина при -56ºС.

3. Завершение декальцинации определяют по

1) изменению цвета образца;
2) отсутствию хруста при протыкании образца иголкой;+
3) повышению pH раствора до 8.0;
4) помутнению декальцинирующей жидкости;
5) понижению pH раствора до 5.0.

4. Из всех нижеперечисленных органов аутолиз быстрее всего начинает развиваться в

1) миокарде;
2) печени;
3) поджелудочной железе;+
4) селезенке;
5) скелетных мышцах.

5. Из всех нижеперечисленных сложных фиксаторов формалин не содержит

1) жидкость Буэна;
2) жидкость Карнуа;+
3) жидкость Орта;
4) жидкость Рего;
5) жидкость Ценкера.

6. Из паренхиматозного органа кусочек ткани для исследования иссекают

1) безразлично к ориентации вырезаемого кусочка;
2) безразлично к строению исследуемого органа;
3) перпендикулярно его поверхности с учетом строения органа;+
4) тангенциально к поверхности органа и с учетом его строения.

7. Иммерсионые методы фиксации

1) инактивируют ферменты за счет вытеснения воды из межклеточной жидкости;
2) инактивируют ферменты за счет денатурации белков и дегидратации;+
3) инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в кислую сторону;
4) инактивируют ферменты за счет резкого сдвига pH в щелочную сторону.

8. К заливочным средам относятся

1) ацетон, спирт, пикриновая кислота;
2) воск, карбовакс, терменвокс;
3) парафин, целлоидин, желатин;+
4) спирт-эфир.

9. К простым иммерсионным фиксаторам относится

1) жидкость Буэна;
2) жидкость Карнуа;
3) жидкость Рего;
4) формалин;+
5) ценкер-формол.

10. К физическим методам фиксации относят

1) применение абсолютного спирта;
2) применение ацетона;
3) применение низкой температуры;+
4) применение раствора формалина.

11. Каждый кусочек ткани маркируется

1) перед заливкой в фиксирующий раствор;+
2) перед наклеиванием на предметное стекло;
3) перед проводкой;
4) после фиксации.

12. Лучшим фиксатором для исследования липидов является

1) пикриновая кислота;
2) уксусная кислота;
3) хромовая кислота;
4) четырехокись осмия.+

13. Лучшим фиксатором для исследования митохондрий и комплекса Гольджий является

1) пикриновая кислота;
2) уксусная кислота;
3) хромовая кислота;+
4) четырехокись осмия.

14. Лучшим фиксатором для исследования срочных биопсий и гистохимических исследований является

1) ацетон;+
2) бутиловый спирт;
3) изоамиловый спирт;
4) метиловый спирт;
5) этиловый спирт.

15. Лучшим фиксатором для мазков крови является

1) ацетон;
2) бутиловый спирт;
3) изоамиловый спирт;
4) метиловый спирт;+
5) этиловый спирт.

16. Минимальное время промывки материала после формалиновой фиксации при условии небольшого размера кусочков составляет

1) 1 час;+
2) 12 часов;
3) 2 часа;
4) 24 часа;
5) 3 часа.

17. На поперечном срезе исследуют

1) серозные оболочки;
2) стенки паренхиматозных органов;
3) стенки полых органов;+
4) эндокринные железы.

18. Нейтрализация формалина производится добавлением

1) бихромата калия;
2) молибдата аммония;
3) углекислого кальция;+
4) цитрата натрия;
5) этилового спирта.

19. Объем фиксирующей жидкости должен превышать объем кусочков

1) не мене чем в 2-3 раза;
2) не менее чем в 10-15 раз;+
3) не менее чем в 20 раз;
4) не менее чем в 5 раз;
5) соответствовать объему кусочков.

20. Обязательным условием для фиксации материала срочных биопсий является

1) наличие спирта в фиксирующей жидкости;
2) наличие сулемы в фиксирующей жидкости;
3) наличие формалина в фиксирующей жидкости;
4) повышенная как минимум до 56 градусов С температура;+
5) пониженная как минимум до 12 градусов С температура.

21. Оптимальный объем костной ткани для успешного проведения декальцинации вне зависимости от способа (химический, электролитический) составляет

1) 0,5 куб. см;
2) 1 куб. см;+
3) 2 куб. см;
4) 4 куб. см.

22. Освобождение ткани от формалина после фиксации проводится с помощью

1) длительного пребывание в кислом растворе;
2) промывки в 90º-96º спирте;
3) промывки в проточной воде;+
4) промывки в смеси пикриновой кислоты и 70º-80º спирта.

23. Показанием для замены фиксирующей жидкости на новую порцию является

1) её помутнение или изменение цвета;+
2) изменение её вязкости;
3) увеличение её объема;
4) уменьшение её объема.

24. При гистохимических методах исследования физические (низкотемпературные) методы фиксации предпочтительнее, потому что они

1) менее ресурсозатратны;
2) на порядки быстрее инактивируют ферменты;+
3) не деформируют ткани;
4) не приводят к денатурации белка.

25. При исследовании патологически измененных органов обязательным условием для вырезки является

1) вырезка всего объема измененной ткани;
2) вырезка максимально большого участка измененной ткани;
3) вырезка минимально необходимого участка измененной ткани;
4) вырезка с захватом здоровой ткани.+

26. Проводка материала по спиртам возрастающей концентрации имеет целью

1) обезвоживание и обезжиривание материала;
2) уплотнение и обезвоживание материала;
3) уплотнение и обезжиривание материала;
4) уплотнение, обезвоживание и обезжиривание материала.+

27. Промежуточным растворителем для парафина является

1) ацетон;
2) карбовакс;
3) ксилол или толуол;+
4) пчелиный воск;
5) спирт-эфир.

28. Сильнее всего сморщивает ткани

1) фиксация ацетоном;+
2) фиксация бутиловым спиртом;
3) фиксация метиловым спиртом;
4) фиксация формалином;
5) фиксация этиловым спиртом.

29. Спиртовая фиксация по сравнению с формалиновой

1) менее требовательная к размерам кусочков;
2) полностью блокирует ферменты при любой концентрации этанола и при любой температуре;
3) протекает быстрее;
4) сильнее сморщивает ткани.+

30. Толщина кусочка ткани перед заливкой в фиксирующие смеси не должны превышать

1) 0,5-1см;+
2) 1,5-2.0 см;
3) 1-1,5 см;
4) размеры не имеют значения.

31. Фиксирующее действие этанола реализуется за счет

1) дегидратации;+
2) денатурации белков;
3) деполимеризации углеводов;
4) обратимого обезжиривания клеток;
5) функционального истощения ферментных систем.

32. Формалин (формол) является

1) 10% водным раствором формальдегида;
2) 15% водным раствором формальдегида;
3) 20% водным раствором формальдегида;
4) 35-40% водным раствором формальдегида;+
5) 5% водным раствором формальдегида.

33. Формалин имеет кислое значение pH так как он

1) является альдегидом ацетилсалициловой кислоты;
2) является альдегидом глутаровой кислоты;
3) является альдегидом лимонной кислоты;
4) является альдегидом муравьиной кислоты;+
5) является альдегидом уксусной кислоты.

34. Формалиновый пигмент можно удалить из ткани с помощью

1) промывки в большом количестве воды;+
2) промывки в ксилоле;
3) промывки в спиртах возрастающей концентрации;
4) промывки в спиртах понижающейся концентрации.

35. Цель фиксации

1) обезвоживание ткани;
2) обезжиривание тканей;
3) сохранение прижизненных структур ткани;+
4) уплотнение тканей.

36. Что из нижеперечисленного нельзя делать с материалом перед его погружением в фиксирующий раствор?

1) ополаскивать водой;+
2) ополаскивать раствором фиксатора;
3) опускать в раствор фиксатора сразу же после иссечения;
4) проводить его маркировку.

Поделиться ссылкой: